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NK细胞活性测定:同位素法

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发表于 2011-3-20 11:38:40 | 只看该作者 回帖奖励 |倒序浏览 |阅读模式
一、原理
" I( A0 Z2 d4 H( m1 k5 ~/ `' ?9 m" }
将用同位素3H-TdR标记的靶细胞与淋巴细胞共同培养时,靶细胞可被NK细胞杀伤。同位素便从被杀伤的靶细胞中释放出来,其释放的量与NK细胞活性成正比。通过测定靶细胞3H-TdR的释放率即可反应NK细胞的活性。5 B, B7 B! E4 c- N& I! f6 g
0 x, p- A% I( ]
二、仪器和材料+ A# B, A5 U: ]
: A; m8 t$ Z' F1 _# d
液体闪烁仪、多头细胞取集器、二氧化碳培养箱、3H-TdR、RPMI1640 完全培养液、Hank's液(pH7.2~7.4)、YAC-1细胞、Triton X-100
6 u/ f3 [, ^) }) `$ f2 K: u' a) r. e
* Z# n- o$ c) D" v5 b三、实验步骤7 v0 C6 p0 p# X2 i/ I! s6 d, a

6 F. l3 Q% T0 F1 `/ V+ J+ |1、靶细胞的标记
8 ^% ~; N& O6 ]9 H( C1 c7 D
- {, w/ [6 e. I% v  G/ P# ]! h取传代后24h生长良好的YAC-1细胞(存活率>95%)按1×106/mL YAC-1细胞悬液加3H-TdR 10uCi进行标记,于37℃、5%CO2培养箱中培养2h,每30min振荡1次。标记后的细胞用培养液洗涤3次,重悬于培养液中,使细胞浓度为1×105个/mL。
8 o3 P9 \3 E. E% y! e2 v  o" {9 K4 l+ T5 x: O
2、脾细胞悬液的制备(效应细胞)! m3 Y1 h6 ~4 }
5 X  ^7 q8 x& m; @4 ?4 }# z
无菌取脾,置于盛有适量无菌Hank's液的小平皿中,用镊子轻轻将脾撕碎,制成单细胞悬液。经200目筛网过滤,用Hank's液洗3次,每次离心10min(1000r/min)。然后将细胞悬浮于2mL的完全培养液中,用台酚兰染色计数活细胞数(应在95%以上),最后用RPMI1640完全培养液调整细胞浓度为1×107个/mL。
/ d4 G5 Z- E* V* C; }& L" o0 z; Y3 L$ O$ r9 D' A8 r: }
3、NK细胞活性测定
! P; i/ X, b& O- P( A3 g4 n# B( O7 w" [
在96孔培养板中每孔加100μL标记的靶细胞,实验孔加100μL效应细胞,空白对照孔加100μL培养液,最大释放孔加100μL  2.5% Triton X-100。每个样品设3个复孔,置5%CO2、37℃培养箱内温育4h,用多头细胞收集器将细胞收集在玻璃纤维滤纸上,用液体闪烁仪进行测量。$ }' A+ T$ w& ?( }
7 T4 m. g5 I+ T4 k3 |: W6 c9 n. i- H
按下式计算NK细胞活性:. e1 r  A! P2 w9 F  H6 |

$ l/ O5 B" K" G+ o$ `1 h6 X" z                               实验孔cpm1 Z+ f. G6 @, |+ |1 x
. B; |8 U( g! G
NK细胞活性(%)=(1- ──────────────────) ×100%
* i  i8 e1 \8 `: t9 f) Q
3 p3 F) d3 ?! u2 k5 [0 d3 s: u                                       空白对照孔cpm - 最大释放孔cpm6 ^% [" Q) Y1 I0 P- A- X7 S
/ H2 q: Y8 J5 z+ A6 [4 S2 U
4、数据处理及结果判定
4 k8 v1 o% V, g* R7 V% P% i4 R8 @2 L9 \( x! K9 \, d# V
NK细胞活性需进行数据转换,X=Sin-1 ,式中P为NK细胞活性,用小数表示。在进行方差分析时,需按方差分析的程序先进行方差齐性检验,方差齐,计算F值,F值< F0.05,结论:各组均数间差异无显著性;F值≥F0.05,P≤0.05,用多个实验组和一个对照组间均数的两两比较方法进行统计;对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换,待满足正态或方差齐要求后,用转换后的数据进行统计;若变量转换后仍未达到正态或方差齐的目的,改用秩和检验进行统计。* z7 }2 q8 W* a9 n5 K0 Z7 g

! B$ S6 ?( q7 t受试样品组的NK细胞活性显著高于对照组的NK细胞活性,可判定该项实验结果阳性。

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